BCA 蛋白定量法基于碱性条件下蛋白质与铜离子络合,结合 BCA 试剂形成紫色复合物,通过吸光度变化反映蛋白浓度。该方法操作简便、灵敏度较高,适用于细胞裂解液、组织提取液、免疫沉淀样本等多种蛋白样本定量。

在碱性环境中,蛋白质肽键与 Cu²⁺发生反应,形成蛋白 - 铜离子复合物;该复合物可与 BCA 试剂结合,生成紫色产物。产物颜色深浅与蛋白浓度正相关,通过测定 562 nm 附近吸光度即可计算样本蛋白浓度。
BCA 法的主要优点包括:
操作简单,适合多样本处理
灵敏度较高
常规缓冲液干扰相对较低
结果稳定,适合 SDS-PAGE、WB 等实验前定量
常规 BCA 蛋白定量试剂盒通常包含:
BCA 试剂 A
BCA 试剂 B
蛋白标准品
缓冲液或稀释液
96 孔板或试管
说明书
使用前应确认试剂无沉淀、无污染,并按说明书要求恢复至合适温度。
准备蛋白标准品,并按说明书进行梯度稀释;
设置多个标准浓度点,覆盖实验样本预期浓度范围;
将标准品与 BCA 工作液按比例混合;
在合适温度下孵育;
测定吸光度;
以蛋白浓度为横坐标、吸光度为纵坐标绘制标准曲线;
根据标准曲线计算样本蛋白浓度。
标准曲线建议每个浓度点设置复孔,以提高重复性。
取适量蛋白样本加入孔板或试管中;
加入配制好的 BCA 工作液;
充分混匀,避免气泡;
按说明书条件孵育;
冷却后测定吸光度;
根据标准曲线计算样本浓度;
记录结果并判断是否需要稀释或浓缩。
BCA 工作液通常由试剂 A 和试剂 B 按一定比例混合而成。不同品牌比例可能不同,必须以具体试剂盒说明书为准。
配制时应注意:
准确量取 A 液和 B 液
充分混匀
避免产生大量气泡
建议现配现用或按说明书保存
如出现沉淀或浑浊,不建议继续使用
标准曲线范围应尽量覆盖样本浓度,否则可能导致定量偏差。
选择原则:
低浓度样本不宜选择过高标曲范围
高浓度样本应适当稀释后再检测
样本吸光度最好落在标准曲线线性区间内
标准品稀释要准确,建议使用同一缓冲液体系
如果样本浓度超出标曲范围,应稀释样本后重新检测,而不是强行外推。
| 问题 | 可能原因 | 解决建议 |
|---|---|---|
| 标准曲线线性差 | 标准品稀释不准确、加样误差大、气泡干扰 | 提高加样精度,设置复孔,充分混匀 |
| 样本孔吸光度异常 | 缓冲液干扰、蛋白降解、样本污染 | 优化样本制备,设置空白对照,确认样本状态 |
| 颜色不均或气泡多 | 加样后混匀不充分 | 轻柔混匀,离心或静置排除气泡 |
| 检测结果重复性差 | 孵育条件不一致、温度波动 | 统一孵育时间和温度,减少操作差异 |
| 试剂出现沉淀 | 保存条件不当或反复冻融 | 按说明书保存,避免高温和反复冻融 |
不同品牌试剂盒保存条件可能不同,应以说明书为准。一般建议:
试剂避光保存
避免反复冻融
工作液按要求配制,不建议长期存放
标准品使用后及时分装保存
实验前检查试剂状态,发现异常停止使用
每次实验建议同时做标准曲线,不建议套用上次标曲;
设置空白孔和对照孔,排除缓冲液影响;
样本浓度过高时应稀释,保证吸光度落在线性范围内;
复孔 CV 值应控制在合理范围;
对珍贵样本建议先做预实验,确定最佳上样量。
引录生物可提供BCA 蛋白定量试剂盒及蛋白定量检测服务,试剂性能稳定,适合细胞裂解液、组织样本和免疫沉淀样本等蛋白定量实验。