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Western Blot 实验全流程:样本制备、转膜、孵育、条带杂带去除技巧


2026-11-02
Western Blot 用于检测样本中目标蛋白表达水平,广泛用于动物组织、细胞样本蛋白验证。WB 结果不稳定、杂带多、信号弱是科研最常见痛点,本文按流程梳理操作要点、试剂选择和 troubleshooting 方案。

WB(蛋白免疫印迹)是分子、细胞、动物课题标配实验,用来验证造模、药物处理后蛋白表达变化,和 qPCR 转录水平结果互相佐证。整套流程分为蛋白提取、蛋白定量、SDS-PAGE 电泳、转膜、封闭、一抗二抗孵育、ECL 发光成像。


一、样本制备关键

细胞 / 组织样本提取蛋白,建议加入蛋白酶抑制剂、磷酸酶抑制剂(做磷酸化蛋白必加);组织尽量低温研磨,避免蛋白降解;BCA 法蛋白定量,保证上样量一致,是条带对比可信的基础。 蛋白变性:上样缓冲液混匀,95℃煮沸 5–10min,分装冻存,避免反复冻融降解。


二、电泳、转膜要点

根据目标蛋白分子量配置分离胶;小分子蛋白用高浓度胶、大分子蛋白低浓度胶;转膜分湿转、半干转,湿转稳定性更好,适合新手;转膜缓冲液预冷,控制电流电压和时间,防止转膜不足或者转穿。 膜选择:NC 膜、PVDF 膜;PVDF 膜需要甲醇活化,结合能力更强,目前使用更多。


三、封闭与抗体孵育

5% 脱脂奶或者 BSA 封闭 1–2h;磷酸化蛋白检测不建议脱脂奶封闭,牛奶里含磷酸蛋白,容易造成背景升高,优先 BSA。 一抗推荐 4℃摇床过夜,结合特异性更好;二抗室温 1h,孵育后充分 TBST 洗涤,洗涤不充分是高背景头号原因。


Western Blot 蛋白电泳转膜与 ECL 化学发光成像实验


四、发光与常见问题排查

使用超敏 ECL 发光试剂盒,滴加发光液后成像。

  • 无条带:蛋白降解、一抗不匹配、转膜失败、上样量太低;

  • 多条杂带:蛋白降解、抗体非特异结合、蛋白过度上样;

  • 背景发黑:封闭不足、洗涤次数太少、二抗浓度过高;

  • 条带拖尾:样本降解、胶配制不均。


五、研录生物 WB 服务

研录生物提供 WB 全包实验:组织 / 细胞样本接收、蛋白提取、BCA 定量、电泳转膜、抗体孵育、ECL 发光拍照,可根据客户方案选择内参、Marker,配套超敏 ECL 发光试剂盒、BCA 定量试剂盒,同时承接 IP、ChIP、免疫荧光等蛋白互作实验。

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