软骨细胞属于终末分化细胞,体外极易发生去分化,失去 Ⅱ 型胶原表达,是软骨相关实验最大难点。很多课题使用大鼠、兔关节原代软骨细胞,配合成软骨诱导体系,用于软骨损伤修复、药物促软骨再生筛选。
取新生或者幼年 SD 大鼠膝关节透明软骨,在无菌冰 PBS 环境下剥离软骨,尽量剔除骨组织、滑膜;软骨剪碎成 1mm³ 细小组织块,先后用胰蛋白酶、Ⅱ 型胶原酶分次消化,过滤、离心收集细胞,接种于软骨专用培养基。
关键点:软骨取材全程低温,减少细胞凋亡;胶原酶消化时间需要摸索,消化过久细胞活性下降,消化不足细胞得率低。
原代 P0 代软骨细胞形态偏多边形、铺路石样;随着传代(P2、P3 之后)慢慢拉长,向成纤维样转变,也就是软骨细胞去分化。一般建议实验使用 P0-P2 代细胞,P3 之后 Ⅱ 型胶原表达明显下降,不适合诱导分化实验。 培养环境:37℃、5% CO₂,定期换液,及时清除漂浮死细胞。
使用商品化成软骨诱导培养基,连续诱导 14–21 天,每隔 2–3 天换诱导液;诱导结束后采用阿利新蓝染色(阿利新蓝 - 核固红染色),酸性黏多糖(糖胺聚糖)呈蓝染,直观判断软骨基质分泌情况。 同步鉴定:免疫荧光、qPCR 检测 Col2a1、Aggrecan 软骨标志物。

固定不充分:基质脱落,染色偏弱;推荐 4% 多聚甲醛固定 15–30min;
pH 值不对:阿利新蓝染色液 pH 很关键,偏离标准区间染色背景脏、假阳性;
分化时间不足:诱导 7 天基质很少,蓝染不明显,建议至少 14 天起。
研录生物可定制分离大鼠、小鼠、兔源原代软骨细胞,同时提供干细胞成脂、成骨、成软骨三分化诱导服务,配套阿利新蓝、茜素红、油红 O 染色试剂盒,可直接承接染色拍照、图像分析外包,输出原始图片和定量结果。