外泌体是细胞向外分泌的纳米级胞外囊泡,收集干细胞培养上清是获取外泌体的原料来源。如果使用含血清培养基收集上清,血清自带大量动物源外泌体与杂蛋白,会严重干扰样本,优先选择外泌体专用无血清培养基进行细胞孵育收集上清。细胞状态是源头关键,用于分泌外泌体的干细胞需要处于对数生长期,细胞健康、无支原体污染;老化、大量空泡、碎片多的细胞,收集得到的上清杂质占比很高。
细胞汇合度需要控制合理,不要 100% 长满接触抑制之后再收集上清。细胞铺板之后,更换无血清收集培养基,孵育合适时长再收取上清,孵育时间不宜过长,长时间孵育会积累大量细胞凋亡碎片。收集好的上清,需要做梯度预离心处理,依次去除完整细胞、大细胞碎片、凋亡小体,去除大颗粒杂质之后,再进行外泌体抽提。外泌体抽提试剂,可用于细胞上清的外泌体富集纯化,操作门槛相比超速离心更低。

使用外泌体抽提试剂,上清需要做到预冷处理,按照试剂盒比例加入抽提试剂,充分混匀,低温静置孵育;孵育结束之后,通过离心沉淀得到外泌体粗沉淀。重悬沉淀的时候动作务必轻柔,剧烈吹打会破坏囊泡结构,造成外泌体破损失活。得到的外泌体样本建议快速分装,80℃避光保存,坚决避免样本反复冻融,反复冻融将会大量破坏囊泡结构,丢失生物活性。
实操高频踩坑:直接使用含血清的培养基收集外泌体上清;细胞老化、污染依旧收集上清;省略上清梯度预离心步骤,大量碎片进入抽提体系;重悬沉淀剧烈吹打;样本反复冻融多次取用。
优化处理方案:选择状态良好对数生长期干细胞;采用无血清体系收集上清;上清做好梯度预离心去除大颗粒杂质;严格遵循抽提试剂孵育、离心参数;轻柔重悬沉淀,分装冻存,减少冻融次数。按照规范操作,能够得到纯度与活性相对理想的外泌体样品,满足 WB、NTA、细胞干预等下游实验需求。