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BCA 蛋白定量浓度偏差大的原因与实验优化技巧


BCA 蛋白定量试剂盒依靠 Cu²⁺被蛋白还原产生显色复合物,通过吸光值换算蛋白样品浓度,广泛用于 WB 样本蛋白上样前定量。操作细节会极大影响最终检测结果,经常出现标准曲线 R² 不达标、同一样本复孔数值差距大,造成后续 WB 上样量不准,条带深浅对比失去参考意义。本文梳理 BCA 检测全流程的误差来源,给出可落地的优化操作方法。

BCA 检测对试剂配比、温度、孵育时长、样品杂质都比较敏感。首先蛋白标准品是建立标准曲线的基础,标准品需要完全溶解混匀,避免局部浓度不均;标准品梯度稀释操作要精准,稀释过程充分吹打混匀。标准品如果降解、反复冻融,直接造成标准曲线线性变差。BCA 蛋白定量检测试剂盒,试剂体系稳定,适合细胞裂解液、组织蛋白裂解液的蛋白浓度测定。

样品制备环节也会引入误差。蛋白裂解液体系里面,如果含有高浓度还原剂、强螯合剂,会干扰 BCA 显色反应,造成结果偏离;蛋白样品没有充分混匀,样品局部浓度不均,复孔之间读数差异大。96 孔板加样阶段,每孔加样体积需要精准统一,避免孔与孔体积不一致带来吸光度偏差;加样过程不要产生气泡,气泡会干扰酶标仪读数。

BCA 蛋白定量检测实验

BCA 工作液按照 A 液:B 液固定比例现配现用,充分混匀之后再加到孔板。孵育温度和孵育时间要统一,温度越高显色速度越快;一批样品,孵育温度、时间必须保持完全一致。孵育完成之后,尽快上机读取 OD 值,显色产物放置过久,吸光值会持续漂移。

常见踩坑:蛋白标准品反复冻融降解,梯度稀释混匀不到位;裂解缓冲液含有干扰 BCA 显色的组分;样品未充分混匀,直接加样;工作液提前配制存放很久再使用;整板孵育时间长短不一,读数拖延。

优化实操要点:蛋白标准品分装保存,减少冻融;评估裂解液组分是否存在干扰物质;样品加样前充分涡旋混匀;BCA 工作液现配现用;保证整板孵育条件统一,孵育结束及时读取吸光值。做好细节,标准曲线可以获得良好线性,样品复孔偏差缩小,蛋白浓度测算更加可信,保障后续 WB 上样定量准确。

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